使结晶物充分溶解Sunday, January 14, 20241. 挑选适应的细胞接种浓度。寻常情景下,96 孔作育板的一内贴壁细胞长满时约有 105 个细胞。但因为分别细胞贴壁后面积分别很大,所以,正在举行 MTT 试验前,要举行预试验检测其贴壁率、倍增时代以及分别接种细胞数前提下的成长弧线,确定试验中每孔的接种细胞数和作育时代,以保障作育终止致细胞过满。云云,才略保障 MTT 结晶变成酌量与细胞数呈的线性相干。不然细胞数太众敏锐性下降,太少调查不到分别。
2. 药物浓度的设定。必然要众看文献,参考别人的结果再定个较量大的规模先初筛。依据本人初筛的结果缩小浓度和时代规模再细筛。切记!不然,或者你用的时代和浓度根底不是药物的有用浓度和时代。3. 时代点的设定。正在分别时代点的测定 OD 值,输入 excel 外,结果取得分别时代点的克造率改变情景,画出改变的弧线,弧线什么时期变得平展了(到了平台期)谁人时代点应当便是最好的时代点(由于这个时期的细胞增殖克造呈现的最昭彰)。4. 作育时代。200ul 的作育液合于 10 的 4~5 次方的增殖期细胞来说,很难坚持 68 h,借使养分不足的话,细胞会由增殖期垂垂趋势 G0 期而趋于静止,影响结果,咱们是正在 48 h 换液的。5.MTT 法只可测定细胞相对数和相对生机,不行测定细胞绝对数。做 MTT 时,尽量无菌操作,由于细菌也可能导致 MTT 比色 OD 值的升高。6. 表面未必都是对的。要依据本人的本质情景调节。7. 试验时应设备调零孔,比照孔,加药孔。调零孔加作育基、MTT、二甲基亚砜。比照孔和加药孔都要加细胞、作育液、MTT、二甲基亚砜,分别的是比照孔加熔解药物的介质,而加药组到场分别浓度的药物。8. 避免血清扰乱。用含 15% 胎牛血清作育液作育细胞时,高的血清物质会影响试验孔的光罗致值。因为试验本底推广,会试验敏锐性。所以,寻常选小于 10% 胎牛血清的作育液举行。正在呈色后,尽量吸净作育孔内糟粕作育液。试验措施贴壁细胞:1. 搜求对数期细胞,调节细胞悬液浓度,每孔到场 100ul, 铺板使待测细胞调密度至 1000 - 10000 孔,(角落孔用无菌 PBS 填充)。2.5%CO2,37℃ 孵育,至细胞单层铺满孔底(96 孔平底板), 到场浓度梯度的药物, 准则上,细胞贴壁后即可加药,或两小时,或半天时代,但咱们常正在前一六合午铺板,越日上午加药. 寻常 5 - 7 个梯度, 每孔 100ul, 设 3 - 5 个复孔. 提议设 5 个,不然难以响应线 小时,颠倒显微镜下调查。4. 每孔到场 20ulMTT 溶液(5 mg/ml,即 0.5%MTT),络续作育 4 h。若药物与 MTT 可能响应,可先离心后弃去作育液,小心用 PBS 冲 2 - 3 遍后,再到场含 MTT 的作育液。5. 终止作育,小心吸去孔内作育液。6. 每孔到场 150ul 二甲基亚砜,置摇床上低速振荡 10 min,使结晶物饱满熔解。正在酶联免疫检测仪 OD490nm 处衡量各孔的吸光值。7. 同时设备调零孔(作育基、MTT、二甲基亚砜),比照孔(细胞、沟通浓度的药物熔解介质、作育液、MTT、二甲基亚砜)悬浮细胞:1)搜求对数期细胞,调动细胞悬液浓度 1×106 /ml,按次次将①补足的 1640(无血清)作育基 40ul ;②加 Actinomycin D(有毒性)10ul 用作育液稀释 lg/ml,需预试寻找最佳稀释度,1:10 - 1:20);③需检测物 10ul;④细胞悬液 50ul(即 5×104cell/孔),共 100ul 到场到 96 孔板(角落孔用无菌水填充)。每板设比照(加 100(贮存液 100 1640)。2)置 37℃,5%CO2 孵育 16 - 48 小时,颠倒显微镜下调查。3)每孔到场 10 ul MTT 溶液(5 mg/ml,即 0.5%MTT),络续作育 4 h。(悬浮细胞推选运用 WST- 1,作育 4 h 后可跳过措施 4),直接酶联免疫检测仪 OD570nm(630nm 校准)衡量各孔的吸光值)4)离心(1000 转 x10 min),小心吸掉上清,每孔到场 100 ul 二甲基亚砜,置摇床上低速振荡 10 min,使结晶物饱满熔解。正在酶联免疫检测仪 OD570nm(630nm 校准)衡量各孔的吸光值。5)同时设备调零孔(作育基、MTT、二甲基亚砜),比照孔(细胞、沟通浓度的药物熔解介质、作育液、MTT、二甲基亚砜),每组设定 3 复孔。MTT 的配造MTT 寻常最好现用现配,过滤后 4ºC 避光保全两周内有用,或配造成 5 mg/ml 保保存- 20 度永恒保全,避免屡屡冻融,最好小剂量分装,用避光袋或是黑纸、锡箔纸包住避光免得认识。我寻常都把 MTT 粉分装正在 EP 管里,用的时期现配,直接往作育板中加,没需要须臾配那么众, 特别当 MTT 变为灰绿色时就绝对不行再用了。MTT 有致癌性,用的时期小心, 有前提最好带那种透后的簿膜手套. 配成的 MTT 需求无菌,MTT 对菌很敏锐;往 96 孔板加时不避光也没相合系,事实时代较短,或者你担心心的时期可能把操作台上的照明灯合掉.配造 MTT 时用用 PBS
细胞过了 30 代自此就不要用了, 由于形态欠好了; 作育板要用好的(最好进口板),欠好的板或反复诈欺的板只可做预试验。
接种时最好服从预试验试探出的密度接种, 由于细胞密度正在 10000 /ml 旁边时,所测得的 OD 值的区间即细胞克造率(或者增值率)的所暴露的线性相干最好,结果最可托。借使铺的太稀细胞的杀伤不会很昭彰,太密细胞或者都邑凋亡,由于细胞长的太疾养分会不足,结果导致物化。且而细胞过密或者过少,增殖都邑过疾或者过慢,其增值率线性相干不佳。故而 MTT 细胞密度众采用 10000 /ml,100ul/孔。
细胞密度要依据分别细胞的特色来定. 借使你做的药品对细胞具有刺激感化那么取小点的细胞浓度,借使你做的药品对细胞具有克造感化那么取大点的细胞浓度,云云与比照的区别更昭彰,数据更好。悬浮细胞每孔的细胞数可抵达 105, 贴壁细胞可为 103 - 104.
1. 起初细胞的接种密度必然不行过大,寻常每孔 1000 个旁边就够了,我以为宁少勿众。特别是合于肿瘤细胞。10000 /孔是太高了,云云纵然药物有感化,MTT 步骤也是呈现不出的,最佳点板浓度正在 4000 - 5000 /孔,太少的线.MTT 自己便是较量粗的试验,增殖率 10% 旁边的摇动都不算怪僻。万分是新手,20% 的摇动也是常睹的,于是很或者是技艺因为惹起的,万分是种板技艺必然要过合。
3. 我做的是肿瘤细胞的 MTT 试验, 这种细胞长的很疾一开首我是用 100000 /ML 的浓度来接种的, 结果细胞长的太满结果是没有梯度也没有线性相干. 其后调节浓度, 用过 40000~80000 /ML 的浓度都做过 MTT 试验, 结果发觉做的结果较量好点的是 60000~70000 /ML 的浓度组的. 用 40000 /M 的浓度的组, 因为细胞少, 药物感化的梯度仍旧有, 只是没有很好的线性相干. 再有依据细胞成长速率以及药物的特色 (有时代依赖性和浓度依赖性的药物) 来确定作育时代是 48 小时仍旧 72 小时.
留神细胞悬液必然要混匀,已避免细胞浸淀下来,导致每孔中的细胞数目不等,可能每接几个就要再混匀一下。加样器操作要熟练,尽量避免人工差错。固然移液器比移液管正确得众,然则借使操作不熟,CV 会正在 8% 旁边。别的,吹散次数过众也会影响细胞生机。于是要熟练鞋、疾些上板。
1. 奏乐时悬液总量不行太众,抵达吸管吸液量的 3 到 4 倍,或者较量容易混匀。10 ml 的离心管内部最好装 3~4 ml 的悬液:悬液太少容易吹起良众气泡,悬液太众又谢绝易吹成单细胞悬液。。。
2. 吸管的吸液量最幸亏 1 ml 旁边:吸液量过众的话,一下吸起良众液体,管中所剩就很少,云云奏乐容易起泡,吸液量过少,奏乐的力度就不足,奏乐就会不屈均。借使是吸液量 1 ml 众的吸管,总液量正在 5 ml 旁边为益
3. 吸的时期要正在悬液底部,然后提起来一点,然则吹下去的时期不要脱节液面,不然容易奏乐出气泡。
4. 奏乐次数 100 旁边,就可能奏乐平均了(有人以为加细胞前奏乐 30-50 次根基就差不众平均了。加细胞的时期每接种 2 孔屡屡奏乐 3 次,每奏乐 3 次后qiang头垂悬与细胞悬液中 5 秒钟,然后再以必然的速率摄取悬液。)
5. 向每孔顶用*头到场细胞时不要太疾,不然你会发觉细胞正在到场的刹时会因为*头的冲力正在孔底聚合一堆,寻常都正在孔的底部主题,而周边很少,这种不屈均的阔别会发生接触克造,影响细胞的成长。于是速率不行太疾也不行太慢。我习性每块板加完后平握手中,向左 3 下,向右 3 下,正在往返答复 3 下挪动,主意是使得细胞能阔别的平均些。(铺板技艺是 MTT 试验的合节,也是根柢,必然要练好。一经有同窗用漩涡振荡器混匀细胞,结果细胞全死了,提议不要采用这种步骤混匀细胞。
私人以为 MTT 最合节的是你的细胞数目和你到场真正起感化的的 MTT 的适应比例,详细细胞数目和真正起感化的的 MTT 之间的相干确实欠好确定,我以为 MTT 众加少许比少加好少许
MTT 的量各家报道分别,寻常是过量的,于是 10ul 即够了。借使不运用 96 孔板,作育基赶上 100ul,MTT 服从 10% 的比例到场. 到场 MTT 自此振荡一下让 MTT 与作育基混匀,然而这个应当相干不大。
如到场 MTT 后都有部分孔立地变为蓝玄色,则污染的或者性極大, 别的 MTT 稀釋後到场細胞前還是需求以過濾的格式滅菌為宜. 且正在加 MTT 前可能先正在镜下调查,看看是否有孔染菌,染菌的孔每每是邻近的
由于血清中白卵白对大一面的药物都有集合效应,于是可能零丁将药物和 MTT 加正在一道,看会不会起响应。借使不起响应,就无须去除含药物的培液,直接加 MTT 即可。
1. 加 DMSO 前要把液体吸掉,但作育液里的紫色结晶或者会吸去,可正在这之前先用平板离心计离心 96 孔板,2000r,5 分钟,然后吸掉上清 (借使是悬浮细胞,则推选此法, 悬浮细胞要离心 2500rpm×10 min. 且其做 MTT 最好用圆底型 96 孔板, 排除上清时留神不要把下面的结晶颗粒吸掉, 提议各孔吸弃 150 - 160ul 即可)。
2. 我每次将 MTT 到场后,再孵育四个小时,然后用离心计离心 1000 G,5 min。然则用*小心地吸上清,仍旧会将一小一面蓝色结晶吸出。于是仍旧提议翻转倒扣的步骤吧!
3. 别的,可能直接将板翻转倒扣(垫几层滤纸)2-3 次,比用「吸」的设施更谢绝易使细胞分离出来。可能轻拍,或者倾斜一点帮手吸液,发觉紫色结晶险些没有肉眼可睹的掉脱,但条件是你自己细胞贴壁要较量牢,半贴壁成长的细胞容易分离。要是药物感化时代长的话,阴性比照组或者因为细胞过众而使到场MTT后变成的结晶漂起来,云云就不行直接倒掉上清。
4. 做 MTT 时,这一措施必然要小心,不要采用倒的格式。由于贴壁不牢的细胞会被倒掉,从而影响 OD 值。悬浮细胞,不要翻板,离心后也不要翻板,这个步骤害死人。
5. 加完 MTT 响应 3-4 h 后,从作育箱取出 96 孔板的手脚要温柔,避免振荡结晶, 使其滑落. 你可能试着将 96 孔板倾斜 30 度角,然后用*尖缓慢吸,有的细胞可能用排枪一道吸,有的则要耐心的一个个用*头吸,*尖的力度和目标要保障每个孔都相似。不要让*头接触到孔底,且一朝倾斜孔板后就不要屡屡倾斜放平,云云也会使结晶零落。
6. 用医用的打针器加上针头摄取液体的,摄取时要把板子斜放,沿着壁摄取就好了!这回 MTT 我用 1 ml 针头留神吸作育液, 认为比其它步骤牢靠, 寻常不会吸走紫色结晶.
因为寻常可离心 96 孔板的离心计欠好找。既使是贴壁细胞做 MTT 时,用 DMSO 熔解取得结果也欠好,不是得不到预期结果便是可反复性差。
处理步骤 1: 用以下文献步骤:周筑军等,评判抗癌物质活性的矫正 MTT 步骤,中邦医药工业杂志,1993,24(10):455 - 457
配三联熔解液:10%SDS,5% 异丁醇,0.012mol/LHCL,蒸馏水熔解。
操作:正在作育板上加必然密度的细胞悬液,90ul/孔;如需给药,则再于同时 (悬浮细胞) 或 4 h 后 (贴壁细胞) 到场分别浓度的药物 10ul/孔,均设三复孔。别的,每块板上另没一个调零孔 (只加作育液,不含细胞和药物)。作育 2d 后,到场 MTT 溶液 20ul/孔,络续作育 4 h,然后到场上述三联液 100ul/孔,于 37 度安插歇宿后,用酶标仪测各孔 A570 值。
处理步骤 2:日本同仁有一种新试剂 CCK- 8 试剂, CCK- 8 试剂可用于轻易而正确的细胞增殖和毒性说明。其基根源理为:该试剂中含有 WST–8[其化学名称为:2 -(2 -甲氧基- 4 -硝基苯基)- 3 -(4 -硝基苯基)- 5 -(2,4 -二磺酸苯)- 2 H-四唑单钠盐],它正在电子载体 1 -甲氧基- 5 -甲基吩嗪 硫酸二甲酯(1 -Methoxy PMS)的感化下被细胞线粒体中的脱氢酶还原为具有高度水溶性的黄色甲 染料(Formazan dye)。天生的甲 物的数目与活细胞的数目成正比,所以可诈欺这一特色直接举行细胞增殖和毒性说明。CCK- 8 试剂中已预先配入了举行细胞增殖和毒性说明所需的因素,无需再用缓冲液或作育基举行稀释;同时,CCK- 8 试剂无需任何放射性同位素和有机溶剂。所以,无需万分的手腕,就可使每一位运用者正确、迅速地取得重现性好的试验结果。
1、接种细胞悬液 100μl 于 96 孔板内,预先置于 37℃,5% CO 2 饱和湿度作育箱内作育。
4、正在 450nm 波甜头测定吸光度,参比波长为 600nm 或 600nm 以上。
正在统一批试验中最好不要退换 DMSO。加 DMSO 前把孔中液体尽量弃清洁,没有去掉上清直接加 DMSO,一是浸淀会很难熔解. 二作育液的颜色正在检测时也能被测到, 会对结果结果酿成影响。但条件是不行把细胞也一道吸掉,由于云云带来的差错要远深远于作育液没弃清洁带来的差错, 于是要正在保障细胞不被吸掉的条件下,尽量把作育液吸掉。借使作育液没弃清洁,空缺孔也要留有等量的作育液,云云正在检测时可能尽量去除作育液的影响,DMSO 的量也可为 100ul 或 150ul.
1. 加了 DMSO 后用振荡器轻轻振荡 5-10 min, 时代操纵尽量苛酷一点, 安插时代长了会影响结果, 值会偏大, 且结果不成托.
2. 到场 DMSO 后可用排枪屡屡抽吸帮溶,熔解后尽疾检测。借使试验孔不众,提议用此法,因其比振荡熔解功效好。
振荡是为了让甲臜熔解,云云才略更好的衡量吸光度,振荡 96 孔板有专的振荡器,主意: 扎破气泡. 有气泡保存时, 因为其对光的反射与折射感化 (酶标仪的道理是通过测定特定波长透过样品的吸光度揣测样品内特定物质的浓度), 会导致结果偏移.
至于测定波长的挑选是因显色溶液而异的,合于 DMSO,熔解后呈紫(红)色,490nm 有最大罗致值, 而 ATCC 公司的 MTT 试剂盒用的不是 DMSO,它的测定波长是 570。(就如 ELISA 试验选用 OPD 作底物测定波长是 492,选用 TMB 显色液则用 450); 而合于 SDS 和酸化异丙醇,则选用 570nm,而且提议以 655nm 行为参考波长。
DMSO 溶后 10 分钟内测,越放颜色越深,而SDS做为熔解液测罗致光值,其值可正在三天内维系稳定.
细胞密度偏大测出的吸光度也会偏大,细胞密度小吸光度也会偏小;别的跟细胞形态也相合系,细胞形态欠好的话,吸光度值也会低的;细胞数目少,或者是作育的时代短,OD 值也会偏低。借使各个孔的孔间分别性万分昭彰的话注解有或者保存污染, 空缺孔的 OD 值太高,很或者是细菌污染。
复孔直接的 OD 值差异寻常应正在 0.1-0.15,差异太大研商:1. 接种细胞数不屈均,或是接种太众,应保障每孔相似,寻常是每孔 1000-10000 个。可能细胞细胞计数后,到场细胞悬液,再补作育基到预订体积,并轻轻奏乐几次,使细胞平均分散,云云比直接到场预订体积的细胞悬液要好,接种时应加含血清作育基。2. 贴壁时代:18-24 h,借使不足,未悬浮的细胞会被吸掉。
寻常为了试验的正确,每个浓度可能设 5-6 个复孔,可能结果统计时,可能除去一个最高值和一个最低值,或者除去此中数据离谱的值,这些离谱数字的呈现与细胞是否污染,细胞是否正在作育时代死去,是否作育液蒸发过众,加 MTT 液是否正确,正在 37℃,5% 二氧化碳作育箱中孵育时代是否必然(1-4 小时)等有亲切的相干,当然测定 OD 值的仪器办事形态是否寻常也特地首要!(寻常开机预热 20 min)。
MTT 步骤的罗致度正在 0.2~0.8 之间差错较小。这和说明化学中的lambert-beer 定律相合, 对朗伯-比尔定律的偏离正在吸光光度说明中,往往呈现程序弧线不呈直线的情景,万分是当吸光物质浓度较高时,昭彰地看到通过原点向浓度轴弯曲的形势(吸光度轴弯曲)。这种情景称为偏离朗伯-比尔定律。若正在弧线弯曲一面举行定量,将会惹起较大的差错。正在吸光光度说明中,仪器衡量不正确也是差错的要紧源泉。任何光度计都有必然的衡量差错。这些差错或者源泉于光源不屈稳,试验前提有时改变,读数不正确等。
正在光度计中,透射比的标尺刻度平均。吸光度标尺刻度不屈均。合于统一仪器,读数的摇动对透射比为必然值;而对吸光度读数摇动则不再为定值。吸光度越大,读数摇动所惹起的吸光度差错也越大透射比很小或很大时,浓度衡量差错都较大,即光度衡量最好选吸光度读数正在刻度尺的中心而不落两头。待测溶液的透射比 T 正在 15%~65% 之间,或使吸光度 A 正在 0.2~0.8 之间,才略保障衡量的相对差错较小。当 A = 0.434(或透射比 T = 36.8%) 时,衡量的相对差错最小。
1. 最好用 570nm 波长的滤光片,由于 MTT 正在这个波长的吸光度是峰值,换句话说聪敏度高。用其它波长的也有,寻常是 490nm,但我的体会聪敏度下降一半。
2. 咱们用的 BIO-TEK 公司的 ELx800, 寻常值正在 2 以下都是牢靠的, 借使复孔之间值相差太大就要研商是否是试验流程中的差错. 我一经看到园子的有些帖子报道说 OD 值大抵正在 0.2 - 1.2 规模内与活细胞数有较好的线性相干,但 OD 值正在 0.3 - 0.9 规模内或者更佳,若你的 OD 值不正在这个规模内则你试验的细胞数或者不太适合,应调节你的细胞数。
96 孔板周遭一圈的孔寻常只做空缺,不养细胞,不然这四行的数据会偏高或偏低,96 孔板正在作育箱中,因为湿度不足,而作育箱因为具有必然的温度,因为温度梯度使得角落的孔水分蒸发较疾,导致作育基中各式因素浓度改变增大,导致细胞形态分别。合于这种形势,要保障作育箱中的湿度,省略开合作育箱的次数和时代。处理步骤: 将孔板四周的一圈孔一起无须,影响特地大,况且最外一圈必然要加水、PBS 或者作育液,只消能防御蒸发就可能.
(1) 矫正寇式法:lgIC50 = Xm-I(P-(3 -Pm-Pn)/ 4)
举个例子:各组浓度 0.1、0.01、0.001、0.0001、0.00001、0.000001,稀释倍数为 10,最大浓度为 0.1,克造率为 0.95、 0.80、0.65、0.43、0.21,0.06。代入
P = 0.95 + 0.80 + 0.65 + 0.43 + 0.21 + 0.06 = 3.1
lgIC50 =- 1 - 1 *(3.1 -(3 - 0.95 - 0.06)/ 4)=- 3.6025
所少见值以 x±s 外现,行使 SPSS 软件举行方差说明,p0.05 时为相差明显,p0.01 时为相差特地明显。可能以时代为横轴,光罗致值为纵轴绘造细胞生线。或谋划克造率。细胞物化率%= OD 比照组-OD 试验组/OD 比照组
excel 外中可能做两两较量的 T-test, 这个你可能参考一下;你的数据应当用众个样本均数的 T-test,方差说明也可。用的软件是 SPSS 或者 SAS。
作育板要用好的(最好进口板),欠好的板或反复诈欺的板只可做预试验。寻常贴壁成长的细胞用反复诈欺的作育板功效不是很好,由于作育板外层正在临蓐时涂有一层鞭策细胞贴壁的物质,正在冲洗后众半会失落。悬浮或是半悬浮成长的细胞还可能。提议不要用太众次,纵然是进口的板子运用次数也不要赶上 3 次, 底值最幸亏测得值的 1 / 3 一下。
猛烈提议作育板不要反复运用:1、泡酸是可能,然则泡完酸的板子很晦气于细胞的成长,会呈现帖壁欠好,细胞成长迂缓等情景.2、云云的板子消毒灭菌很不彻底,借使有万一, 则削足适履.3、反复用的板子洗不清洁正在作育流程中易呈现杂质.
洗净后用 2%NaoH 浸泡 4 小时,再用 1% 稀盐酸浸泡 4 小时,冲洗 15 遍,蒸馏水冲洗 3 遍,烘干,UV 照耀歇宿 (紫外 2 小时以上消毒即可)
泡酸 2-4 小时,教师让咱们别赶上 4 小时,(平时的玻璃仪器是歇宿)。捞出,冲洗清洁,烘干后,UV 照耀歇宿。猜测跟其他搜求正在一道,钴 60 照耀消毒.
1. 做完MTT后用洪流流尽量将板冲净,然后用洗衣粉水泡几个小时(小心最好让洗衣粉先化开)。2. 用自来水冲净洗衣粉水,倒扣晾干.3. 重铬酸钾加浓硫酸配成的酸液中浸泡歇宿泡洗液 (六小时以上即可) 后自来水洗净(20 次旁边)每个孔都要解决 4. 用去离子水冲洗 3 遍,双蒸水冲洗 3 遍,烤干 5. 超净台中紫外线 个小时旁边,就可能用了,不成能高压。
1、测完值的 96 孔板甩掉孔内作育液,放入超声中超 10 - 30 分钟,晾干 (或烘干) 备用。
2、每孔到场 50 - 100ul 的胰酶 (0.05%),我寻常加 60ul,加完胰酶后程度振荡 96 孔板以使胰酶平均笼罩于细胞皮相,室温下安插至细胞被消化零落为止。要是你念消化疾一点的线 度作育箱内 (胰酶正在 37 度时的生机最大)。
借使不烘干就泡酸,那么 96 孔板残留的水分将稀释酸液,永恒以往泡酸的功效降落。
4、将晾干的 96 孔板泡酸 (中强酸) 歇宿,捞起后自来水下冲洗 10 遍;双蒸水冲洗 3 遍。三蒸水冲洗 3 遍。烘干备用。泡酸时万分留神时代不要太长了,不然板子变黄,影响结果的 OD 值的测定。
5、做试验前,96 孔板起码正在紫外灯下照耀 30 分钟,但不行永恒照耀。紫外线永恒照耀可使板变黄,我的两块板放正在超静台上忘了拿出来,无间照了两个礼拜,等我从超静台上取出板仍然造成黄色。
1、正在试验中若你测得某一个孔的数值偏高,固然有良众身分会导致数值偏高,然则借使是板底的污点惹起的线 孔板擦一擦值偏大孔的板底部,再测值。你会发觉孔高的值又会到寻常程度。由于我们做试验时手不成避免的接触 96 孔板板底留下印迹,这些印迹就会使吸光度升高。
2、96 孔板洗的次数众了,板底自然留下划痕,这就会导致读数的不均而影响试验结果。你没关系正在做试验前测一次 96 孔板的值 (此值为初值),试验测得的为后值。后值减去初值就靠近试验的真正值。
转载请注明出处。